Подписка на обновления

Динамика выделения неадаптивных сероваров Salmonella spp. из проб родительских стад бройлеров

05.08.2026

Динамика выделения неадаптивных сероваров Salmonella spp. из проб родительских стад бройлеров

Одним из обязательных требований к качеству продуктов питания является их безопасность для здоровья человека и стабильность в процессе хранения и реализации. Особое значение для потребителя имеет микробиологическая безопасность пищевых продуктов, обеспечение которой остается основной задачей санитарного контроля на предприятиях, выпускающих мясо-, птице- и яйцепродукты.

Последние годы благодаря системно проводимым мероприятиям сохраняется тенденция к снижению заболеваемости населения сальмонеллезом. Вместе с тем в течение последних 10 лет в Российской Федерации проблема сальмонеллезов продолжает оставаться актуальной за счет существующих рисков инфицирования в условиях интенсивно развивающегося животноводческого и птицеводческого комплекса страны и возможности реализации эпидемического потенциала. В 2025 году зарегистрировано 58 групповых очагов сальмонеллеза с общим количеством пострадавших 1681 человек. Основной причиной формирования групповых очагов сальмонеллеза служит употребление инфицированной пищи, изготовленной на пищеблоках предприятий общественного питания из небезопасной птицеводческой продукции, что подтверждено почти в 90% очагов обнаружением генетического материала возбудителя и выделением культур сальмонелл в пробах продовольственного сырья, мясных полуфабрикатов и готовых блюд [1].

Производители птицеводческой продукции проводят ветеринарно-санитарные мероприятия по недопущению выпуска небезопасной продукции и выявлению источников контаминации на всех этапах технологического процесса выращивания птицы. Существующие в Российской Федерации нормативные документы, регулирующие мероприятия по контролю за сальмонеллезом в птицеводческих хозяйствах, направлены большей частью на профилактику и ликвидацию заболеваний птицы сальмонеллезом. Действующие в Российской Федерации Ветеринарные правила делят возбудителей сальмонеллеза птиц на три группы. Согласно пункту 10.1, по этиологии различают следующие виды сальмонеллеза птиц:

– сальмонеллез, вызываемый S. gallinarum/ pullorum (пуллороз-тиф) и S. enteritidis (сальмонелла- энтеритидис инфекция);

– сальмонеллез водоплавающей птицы, вызываемый S. typhimurium;

– сальмонеллез птиц, вызываемый неадаптированными к птице сероварами сальмонелл (S. haifa, S. anatum, S. heidelberg, S. london и др.).

При этом диагноз на пуллороз-тиф и сальмонелла- энтеритидис инфекции устанавливают на основании клинических признаков, патологоанатомических изменений, эпизоотологических данных и результатов серологических и бактериологических исследований. При выделении неадаптивных к птице сероваров не предполагают постановки клинического диагноза.

11 раздел Ветеринарных правил посвящен профилактике сальмонеллеза птиц, вызываемого неадаптированными к птице сероварами сальмонелл. Согласно требованиям пункта 11.3 Правил, во всех категориях птицеводческих хозяйств проводят исследование патологического материала, образцов подстилки, смывов с продукции и технологического оборудования и т.д. на наличие сальмонелл:

– павших цыплят (эмбрионов), подстилку из ящиков для перевозки суточных цыплят, пыль и перья из выводных шкафов инкубатория, птичника, воду и комбикорма исследуют один раз в месяц;

– пробы подстилки из гнезд птичника — ежеквартально;

– смывы со скорлупы яиц, транспортерных лент яйцесбора, с поверхностей технологического оборудования убойного цеха и яйцесклада, инвентаря, холодильных камер, с тушек птицы — 2‒4 раза в год.

Согласно данным зарубежных авторов, программы контроля сальмонеллеза в ЕС направлены на снижение заболеваемости среди населения путем мониторинга эпидемически значимых сероваров. Такой подход позволил существенно сократить распространенность бактерий на птицеводческих предприятиях.

Эффективность стратегии подтверждается данными EFSA и ECDC (2022): к 2021 году уровень инфицированности снизился до 3,8% в стадах бройлеров и до 9,1% — в стадах индеек. Это привело к значительному уменьшению числа случаев сальмонеллеза у людей: со 153 852 в 2007 году до 60 050 в 2021-м. Тем не менее эксперты отмечают, что с 2014 года положительная динамика замедлилась, что указывает на необходимость пересмотра существующих программ контроля [3].

По классификации ВОЗ, все серовары сальмонелл разделены на три основных группы: в первую группу включены возбудители брюшного тифа и паратифа «A», «B», «C». Эта группа бактерий является наиболее опасной для человека. Во вторую группу включены возбудители первичных сальмонеллезов, имеющих определенную видовую предрасположенность и преимущественно специфическую патогенность в отношении этих видов: для кур— S. gallinarum/pullorum, для лошадей — S. abortusequi, овец — S. abortusovis и т.д. Третью группу сальмонелл составляют серовары, вызывающие все остальные сальмонеллезные заболевания сельскохозяйственных животных (в т.ч. птицы) и человека: S. enteritidis, S. typhimurium, S. thompson, S. choleraesuis, S. brandenburg, S. dublin и другие возбудители, которых нередко выделяют из мяса кур, яиц, а также из патологического материала от больной и павшей птицы. Тем не менее приведенная выше классификация сальмонелл по отношению к восприимчивости человека и патогенности возбудителя не является абсолютной в связи с возможностью одновременного проявления патогенных свойств одного изолята сальмонелл для различных видов животных, птицы и человека [2].

На европейских предприятиях по убою птицы принято проводить убой положительных стад после отрицательных. Исследования европейских авторов показали, что определение статуса инфицирования стад на основе верификации данных смывов с бахил не является достоверными. При проведении параллельного изучения 153 стад, благополучных по результатам смывов, при микробиологическом анализе содержимого кишечника были обнаружены сальмонеллы. При этом в содержимом двенадцатиперстной кишки процент выделения выше, чем в слепой кишке. Исследователи проанализировали зависимость между возрастом птиц и интенсивностью выделения патогенов, однако значимых корреляций не выявили.

Авторы рекомендуют пересмотреть программу мониторинга стад перед убоем, добавить исследование пыли птичников и увеличить количество смывов с бахил [4].

В силу определенных причин в Российской Федерации мало информации об эффективности проводимых мероприятий. Настоящая статья представляет предварительную оценку выделенных культур сальмонелл нетифоидной группы из положительных образцов.

Материалы и методы. Для изучения использовали данные, предоставленные микробиологической лабораторией по результатам исследований за шестилетний период начиная с 2018 года. В учет были взяты показатели мониторинга циркуляции культур сальмонелл нетифоидной группы по стадам родителей бройлеров и данные по выделению из объектов, связанных с продукцией, полученной начиная от инкубационного яйца, отходов инкубации, замерших эмбрионов (задохликов) и заканчивая патологическим материалом от цыплят-бройлеров до 6-дневного возраста. Микробиологические исследования выполнялись по стандартным общепринятым микробиологическим методикам.

Цель работы: поиск наиболее чувствительных точек контроля за циркуляцией бактерий рода сальмонелла нетифоидной группы в популяции кур родительского стада бройлеров на основе анализа данных по выделению положительных проб при бактериологическом исследовании материала, а также оценка возрастной динамики накопления положительных проб в процессе содержания птицы и получения продукции.

Результаты исследования

Пробы материала, из которых при микробиологическом исследовании была выделена культура с характерными для сальмонеллы культуральными, биохимическими и серологическими признаками, были разнесены в таблице по возрастам с интервалом в 30 дней начиная со 170-дневного возраста и до убоя в возрасте 430 дней и старше, если такие стада использовались (см. таблицу). За выбранный период было исследовано 8407 проб, из которых 4567 было получено от кур родительского стада, а остальные — от продукции, связанной с ними. Самый высокий процент положительных проб к количеству исследованных был получен на замерших эмбрионах (15,8%), патологический материал от кур родительского стада и цыплят до 6-дневного возраста примерно одинаков — 3% и 2,2%. Если из патологического материала исключить пробы красного костного мозга, которые за период наблюдения ни разу не давали положительного результата, то процент положительных в патологическом материале вырастает до 4,3%. Менее одного процента или чуть больше получено при исследовании остальных объектов.

Данные таблицы свидетельствуют, что большинство положительных проб выявлено у птиц старше 300 дней, хотя частота отбора проб с возрастом не увеличивалась.

Результаты исследования на бактерии рода сальмонелла нетифоидной группы в популяции кур родительского стада бройлеров

Возраст объектов исследований, дни	Трупы кур родительского стада	Клоакальные смывы от кур родительского стада	Смывы с обуви (бахил)	Содержимое гнезд кур-несушек	Яйцо инкубационное перед закладкой	Замершие эмбрионы	ПУХ (отходы инкубации)	Цыплята- бройлеры (трупы до 6 дн.)	Итого по возрастам	Доля положительных проб, в %
170‒180‒199	0	0	0	0	0	4	0	2	6	2,75
200‒229	3	0	0	0	0	7	0	3	13	5,96
230‒249	1	0	0	0	0	3	0	4	8	3,67
250‒279	0	0	0	0	0	8	0	4	12	5,50
280‒299	1	0	0	0	0	10	0	3	14	6,42
300‒329	1	3	0	0	0	9	0	1	14	6,42
330‒349	6	3	1	0	2	13	1	3	29	13,30
350‒379	1	2	0	0	1	20	1	4	29	13,30
380‒399	7	3	0	1	1	15	2	2	31	14,22
400‒430	1	1	1	0	2	29	0	8	42	19,27
431 и старше	2	0	1	0	0	4	0	1	8	3,67
Итого	35	12	3	1	6	122	4	35	218
Итого исследовано проб	1144	2850	508	65	770	770	770	1530	8407
% положительных	3,06	0,42	0,59	1,54	0,78	15,84	0,52	2,29	2,59

При этом для трупов цыплят-бройлеров в возрасте до 6 дней характерно равномерное распределение положительных проб в течение всего периода, тогда как у замерших эмбрионов частота выделения возбудителя возрастает по мере старения родительского стада. Вероятно, это свидетельствует о постнатальном инфицировании цыплят после вывода. Анализ полученных данных показывает, что пробы смывов с обуви (бахил) и клоакальные смывы примерно одинаковы. Далее идет инкубационное яйцо перед закладкой и содержимое гнезд. Эти объекты проявляют себя после 330 дней. Замершие эмбрионы в качестве контрольного объекта более чувствительны, и положительные пробы регистрируются с начала репродуктивного периода. Вероятность инфицирования эмбрионов во время инкубации полностью исключить нельзя, но, учитывая, что выделения на скорлупе яйца перед закладкой относительно редки, можно сделать предположение о патогенной нагрузке сальмонелл во время инкубации и возрастании чувствительности метода. На это указывает и более низкий процент выделения положительных проб из трупов цыплят до 6-дневного возраста.

При исследовании материала, полученного от павших кур, положительные пробы регистрировались, как правило, в одном из паренхиматозных органов. Это были либо печень, либо селезенка или яичник. В красном костном мозге бедра из 259 проб положительных не выявлено, что указывает на отсутствие генерализованного процесса. Процент положительных проб по внутренним органам находился примерно на одном уровне: 4% — селезенка, 4,3% — печень и 4,5% — фолликулы яичника. Положительные пробы, полученные из слепых отростков и содержимого кишечника, были на уровне 2,8%.

Следует отметить, что за анализируемый период не выделялись культуры сальмонелл, приводящие к заболеванию птицы сальмонеллезом. Это свидетельствует об эффективности проводимых профилактических мероприятий. Однако для снижения уровня инфицированности культурами сальмонелл нетифоидной группы необходимо пересматривать мероприятия. Для этого нужно проводить дополнительные научные исследования в этой области и анализ производственных данных, что затруднено из-за отсутствия нормативной базы и централизованной методической поддержки со стороны научных центров. Для многих ветеринарных врачей инфицирование поголовья бактериями рода сальмонелла нетифоидной группы не является проблемой, требующей решения, до момента выявления положительных проб в продукции со стороны контролирующих органов.

Настоящие выводы и рекомендации базируются на данных шестилетнего лабораторного мониторинга и служат основой для формирования стратегии последующих исследований.

Выводы

●   Для контроля за циркуляцией сальмонелл нетифоидной группы наиболее чувствительными являются объекты с измененным состоянием, находящиеся вне физиологической нормы. В отсутствие клинических признаков сальмонеллеза в стаде процент выделения на таких объектах выше.

Это дает основание судить как о влиянии сальмонелл нетифоидной группы на  тяжесть течения патологического процесса  или  гибель эмбрионов, так и, напротив, о вторичной активации сальмонелл на фоне отклонений в статусе здоровья птицы.

Наиболее чувствительными индикаторами циркуляции нетифоидных сальмонелл являются организмы с отклонениями от физиологической нормы. Тот факт, что уровень выделения возбудителя у клинически здоровых особей выше, позволяет предположить двоякую роль сальмонелл: с одной стороны, они могут усугублять тяжесть патологического процесса или приводить к гибели эмбрионов; с другой — их активация может быть вторичной, возникающей на фоне общего ослабления здоровья птиц.

●   Пробы, взятые с бахил, не всегда являются чувствительным объектом для контроля за инфицированностью бактериями рода сальмонелла нетифоидной группы.

Динамика выделения неадаптивных сероваров Salmonella spp. из проб родительских стад бройлеров

Динамика выделения неадаптивных сероваров Salmonella spp. из проб родительских стад бройлеров

Результаты исследования

Выводы

Рекомендации