Ветеринария

07.08.2025

Практика эффективной комплексной биозащиты бройлерных предприятий от паразитов

В  данной  статье показана  практика  эффективной  комплексной   биозащиты бройлерных предприятий от паразитов (эймерий и клещей у цыплят-бройлеров) и современный комплекс соответствующих ветеринарно-санитарных мероприятий. Проведение этих мероприятий до 22-суточного возраста цыплят-бройлеров обеспечивает значительное сокращение численности ооцист эймерий на полу и в труднодоступных для мойки, дезинфекции и дезинвазии местах.

Подчеркнута необходимость проведения мониторинга эпизоотической ситуации по эймериозам цыплят-бройлеров и  клещевой  инвазии  в  зимний  и весенний сезоны года с целью установления экстенсивности и интенсивности инвазии  при разных технологиях выращивания бройлеров — как бесподстилочной, так и подстилочной. Представлен план подготовки птичников в санитарный период для работы ветеринарной службы с последующей его реализацией. Получены новые данные по уровню зараженности цыплят-бройлеров ооцистами кокцидий при   бесподстилочной   технологии    выращивания в Российской Федерации и при эффективных мероприятиях санитарной ветеринарной службы промышленного птицеводческого предприятия.

Работа выполнена в рамках Программы фундаментальных  научных  исследований в  Российской  Федерации  на  долгосрочный  период  (2021–2030      гг.), составляющей основу  государственного задания № FGUG-2025-0001 без привлечения дополнительных источников финансирования.

Ключевые слова: биозащита птицеводческих предприятий; цыплята-бройлеры; мониторинг; эймериозы, клещи, экстенсивность и интенсивность инвазии

Введение

Анализ состояния технологии промышленного птицеводства в европейских странах показал, что там широко практикуется напольное содержание цыплят- бройлеров — более 90% (в России — 60% поголовья, в азиатских странах и Китае — 35%). Нашими многочисленными исследованиями и другими учеными доказано, что каждое птицеводческое хозяйство, практикующее напольное содержание птицы, неблагополучно по паразитарным болезням, прежде всего по кокцидиозам, которые играют значимую роль в экономике производства мяса цыплят-бройлеров, т.к. нарушают целостность кишечника и процессы усвоения питательных веществ, снижая интенсивность привесов    при    откорме    цыплят-бройлеров. Также встречаются клещи, жуки-хрущаки и другие насекомые, в зависимости от уровня санитарии и биозащиты птицеводческих предприятий.

Актуальность данной темы обусловлена широким распространением в птицеводческих хозяйствах кокцидий, которые в течение короткого времени могут накапливаться в птичниках в больших количествах  и увеличиваться в геометрической прогрессии: полный цикл развития паразита составляет 5–7 дней, следовательно, за 40 дней выращивания цыплят- бройлеров этих циклов может быть от 6 до 8. Кокцидиоз опасен не только сам по себе, но и в ассоциации с другими заболеваниями, что представляет большую угрозу для птицеводства нашей страны.

Отечественные и зарубежные исследователи отмечают, что заболеваемость молодняка кур эймериозом остается высокой, однако форма клинического кокцидиоза перешла в субклиническую и приводит к снижению экономических показателей промышленного птицеводства. Основной причиной признается постоянное применение кокцидиостатиков без учета уровня адаптации к ним кокцидий. Количество устойчивых штаммов кокцидий увеличивается с каждым годом, а использование кокцидиостатиков как традиционных средств борьбы с паразитом свело их эффективность до минимального уровня [4, 5, 7].

Проведенные ранее в ВНИИ фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений исследования  показали, что на бройлерных птицефабриках за период технологического цикла объекты внешней среды были контаминированы инвазионными элементами: ооцистами эймерий, красными     куриными       клещами, подстилочными клещами, жуками-хрущаками, яйцами нематод — аскаридий, гетеракисов и свободноживущих нематод. Несмотря на проведение противоэпизоотических мероприятий, полной профилактики паразитозов среди поголовья в птицеводческих хозяйствах не достигается. Об  этом            свидетельствуют  работы отечественных и  зарубежных ветеринарных паразитологов. В неблагополучных хозяйствах передача инвазии происходит через загрязненные инвазионными  элементами  (ооцистами паразитических простейших, яйцами и личинками гельминтов, а также членистоногих) кормушки, корма, воду, подстилку, инвентарь и прочее. Механическими разносчиками инвазионных элементов часто становятся насекомые, грызуны, синантропные птицы, а также обслуживающий персонал (на обуви, одежде, предметах ухода).

Предполагается, что при бесподстилочной технологии выращивания цыплят-бройлеров эпизоотическая ситуация по эймериозам и инвазированности молодняка будет заметно отличаться от птицеводческих хозяйств с традиционной технологией, где бройлеров выращивают на подстилке. Эти технологические особенности необходимо выявлять, устанавливать их влияние на зараженность цыплят эймериями и учитывать при проведении противоэпизоотических мероприятий.

В связи с вышеизложенным была поставлена задача провести мониторинг эпизоотической ситуации по эймериозам при бесподстилочной технологии выращивания птицы на бройлерном предприятии с современной комплексной биозащитой от паразитов (эймериозов и клещей цыплят-бройлеров). Исследование проводилось в зимнее и весеннее время года, т.е. в наиболее критический период для биозащиты птицефабрик.

Материалы и методы. Изучение эпизоотической ситуации по инвазированности цыплят-бройлеров эймериями проводили в птицеводческом хозяйстве Северо-Западного федерального округа России. На условиях полной  конфиденциальности  хозяйство не называется. При этом в хозяйстве в основном применяется бесподстилочная технология выращивания цыплят, а на другой соседней площадке на одной общей территории — с использованием подстилки (базовый метод, принятый во многих птицефабриках с напольным содержанием в РФ). По принятой в нашей стране технологии производства цыплят-бройлеров в условиях птицефабрик выращивают до 45–46-суточного возраста с последующим их убоем.

Инвазированность цыплят-бройлеров эймериями изучали копроскопическими методами Фюллеборна и Дарлинга в разные сезоны года путем обследования до 20 проб помета при каждой технологии выращивания цыплят следующих возрастных групп: 9–10; 20–21 и 36–38-суточного возраста. В конце технологических циклов при бесподстилочной и подстилочной системах выращивания птицы цыплят- бройлеров изучали на предмет инвазированности молодняка эймериями в наиболее критические в отношении биозащиты периоды: зимой — с января по февраль; весной — с марта по апрель в 2024 и в 2025 гг.).

В ходе выполнения работы определяли экстенсивность (ЭИ) и интенсивность эймериозной инвазии (ИИ) у цыплят разного возраста. Наряду с отмеченным учитывали нематод, членистоногих (при их наличии).

При проведении копроскопических исследований на простейшие руководствовались ГОСТ 25383-82.                       Количество  ооцист   эймерий   подсчитывали   с  использованием  микроскопа  Zeiss  Primo  Star при увеличении ×100 и 400 раз (окуляр ×10, объектив ×10 и 40). Копроскопию проб проводили     в условиях лаборатории эпизоотологии и санитарной паразитологии ВНИИП – филиала ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН. Интенсивность инвазии определяли количественным методом в 1 г помета с использованием камеры МакМастера.

При идентификации видов эймерий отмытую культуру ооцист помещали в чашку Петри, заполненную тонким слоем 2,5%-ного раствора бихромата калия, которую затем выдерживали в термостате при температуре 26 °С до завершения споруляции. Процесс споруляции оценивали путем ежедневного осмотра культуры под микроскопом.

Кроме того, проводили вскрытие павших и убитых цыплят разного возраста; со слизистой оболочки кишечника брали глубокий соскоб и исследовали на наличие паразитических простейших.

По окончании технологического  цикла производства в разные сезоны года (зимой и весной) при разной технологии производства совместно с ветеринарными работниками хозяйств проводили вскрытие 10–15 цыплят-бройлеров убойного возраста, обращая внимание на наличие характерных признаков эймериоза, оценивая их по пятибалльной системе.

Известно, что зараженные эймериями птицы выделяют с пометом большое количество инвазионных элементов, и прежде всего ооцист эймерий, которые загрязняют подстилку,  пол, другие объекты окружающей среды.  С  точки  зрения  эпизоотического  процесса  подстилка  и  пол птичников являются факторами передачи инвазии. После завершения технологического цикла производства и сдачи цыплят на убой проводят механическую уборку, чистку, мойку, ремонт пола, оборудования,  просушку  птичников   по   принятой в хозяйстве программе с последующей влажной дезинфекцией и дезинвазией с заключительной аэрозольной дезинфекцией. Для подтверждения отмеченного проводили взятие соскобов с пола птичников, стен и оборудования после окончания предыдущего технологического цикла производства и в подготовленном к заселению молодняком птичнике (до и после дезинвазии).

Результаты лабораторных исследований проб фекалий от инвазированных эймериями цыплят по количеству обнаруженных ооцист оценивали согласно «Методическим положениям по борьбе с эймериозом цыплят при разной технологии их выращивания в Центральной зоне России» [2]. Шкала установлена нами на основе анализа данных экспериментального заражения цыплят разными дозами спорулированных ооцист и по количеству ооцист, выделенных с пометом инвазированной птицы.

При дифференциальной диагностике исключали гистомоноз, боррелиоз, трихомоноз и пуллороз.

 

Результаты исследований

Проведенные нами исследования показали незначительную загрязненность объектов внешней среды птичников ооцистами кокцидий при бесподстилочной технологии выращивания цыплят- бройлеров при напольном их содержании на одной из птицефабрик СЗФО, применяющей современную программу биобезопасности. Так, в 2024–2025 г. в результате проведенных исследований определена реальная эпизоотическая ситуация по эймериозам при напольном содержании цыплят-бройлеров, установлена   возрастная   и   сезонная   динамика (в зимнее и весеннее время года) зараженности эймериями, контаминация объектов внешней среды инвазионными элементами. Анализ полученных результатов исследований дает возможность ветеринарной службе промышленных птицефабрик нашей страны скорректировать  мероприятия  против эймериозов цыплят-бройлеров при разной технологии их выращивания с целью повышения эффективности комплекса мер по их профилактике и предупреждению. 

В    процессе   выполнения   этих   исследований определена исходная контаминация пола птичников и оценена принятая система подготовки помещений к заселению новым поголовьем, которая состояла из уборки, очистки, мойки с использованием щелочного пенного   средства по  принятой технологии и проведения комплексной дезинфекции и дезинвазии. Согласно инструкции, при влажной дезинфекции птичников, которую осуществляют не   менее двух человек и дежурный слесарь, используются гипохлорит натрия, моечная машина Empas (рис. 4) и средства индивидуальной защиты. По общему правилу, влажная дезинфекция проводится  в птичниках, прошедших очистку и пенную щелочную мойку (среднещелочными моющими препаратами) после выселения очередной партии выращенных цыплят.

Информацию ветслужбе о готовности к проведению влажной дезинфекции дает начальник бройлерного цеха или   бригадир, в ведении которого  находятся подготавливаемые  птичники. В помещениях, где проводится влажная дезинфекция, не должен находиться обслуживающий персонал и работники других служб. Согласно Ветеринарному законодательству (том 2, с. 403), персонал может входить в помещение не ранее чем через три часа после дезинфекции, с использованием респираторов. Во время проведения влажной дезинфекции птичников, согласно инструкции, также рабочими растворами гипохлорита натрия обрабатываются бачки для сбора падежа и брака (непосредственно в птичнике). Перед этим бычки должны быть вымыты бригадой мойки. В зимне-весенний и осенне-зимний периоды применяется дезинвазия пенным методом. Птичник  обрабатывается  в  следующем порядке: потолок, оборудование, стены, в последнюю очередь — пол; со стороны улицы обрабатываются ворота, вытяжные вентиляторы, стены вокруг них и площадка с участком на дороге, прилегающей к птичнику.

Результаты работы записываются в журнал проведения дезинфекции, где фиксируются даты мероприятий, номер птичника, применяемый препарат, количество израсходованного препарата, ставится подпись работников, проводивших дезинфекцию.

Проверка хода выполнения работ осуществляется ветврачом зоны, качество выполнения работ на каждом птичнике определяется после взятия смывов и исследования в ветлаборатории согласно плану производственного контроля.

При проведении аэрозольной дезинфекции используется формалин (раствор формальдегида 36–40%), аэрозольная установка для распыления формалина PULSFOG KA 4 (рис. 5), средства защиты органов дыхания (защитная полная маска серии 6000 фильтр 6075, 6099).

Аэрозольной дезинфекции подвергаются птичники, подготовленные для приемки новой партии цыплят (выселение, очистка, ревизия, установка оборудования, мойка и влажная дезинфекция, побелка).

Перед проведением дезинфекции аэрозолем формалина помещение герметизируют, на входные двери в модуль устанавливают табличку «Не входить! Аэрозольная дезинфекция!». При этом следует проверить двери между модулем и корпусом, которые должны быть открыты. Дезинфектор переодевается в зоне, где проводится обработка, в специальный комбинезон, принесенный с собой, и проверяет температуру воздуха в корпусе, которая должна быть не ниже 25 °С при относительной влажности в пределах 60–80%.

Запуск аэрозольной установки  и  постановка  ее в рабочий режим осуществляется на улице вне помещения с расчетом необходимого количества формалина на каждый корпус согласно кубатуре помещения.

Аэрозольную установку подкатывают в корпус, направляют сопла  установки  внутрь  птичника через специальное окно и включают. После того как аэрозольная установка использовалась в течение часа, а также в случае сильного нагрева она должна остыть, затем ее вновь готовят к работе. По окончании распыления аэрозольную установку необходимо выключить и убрать из корпуса. Дезинфектор модуля переодевается в одежду для перехода и идет на санпропускник.

Проведенную работу принимает ветеринарный врач зоны, регистрируя выполнение операции дезинфектором в специальном журнале, контроль осуществляется главным ветеринарным врачом площадки.

Для установления исходной контаминации паразитами утром перед дезинвазией из птичников, где содержались 40–42-суточные цыплята, отбирали по 10 проб помета и по 10 соскобов из стыков неровностей и трещин пола. Учитывали, с использованием  какого средства проводилась дезинвазия птичников — 5% рабочего раствора препарата на основе глутарового альдегида 1%, глиоксаля 7%, смеси против ооцист кокцидий; дезинсекция препаратом в 1% водном растворе на основе цифлутрина 5%, стабилизатора и растворителей до 100%.

Для установления остаточной контаминации пола и объектов внешней среды ооцистами Eimeria spp. до дезинвазии брали соскобы из разных участков пола, где имелись трещины, щели и  неровности (рис. 5, 6). Для оценки эффективности дезинвазии против эймерий утром по методике, предложенной Андреевой Ю.А. (рис. 1, 3), в специальные чистые пластиковые пакеты с zip-замком (рис. 2) отбирали пробы помета цыплят-бройлеров в 10–12; 20–21; 35–36-суточном возрасте (рис. 7, 8) и исследовали по комбинированному методу Дарлинга.

  

Методика отбора проб помета из корпусов по выращиванию цыплят-бройлеров состояла из следующих этапов:

1. Обученный методике отбора сотрудник птицефабрики брал подписанные маркером (№ корпуса и дата) пластиковые пакеты, перчатки, влажные салфетки, шпатель, кисточку и приходил в назначенный корпус в день, определенный графиком.

2. Последовательно обходя площадь всего корпуса по приведенной схеме, сотрудник отбирал пробы помета. Габариты корпусов были нескольких типов: 96×18×3,4 м и 130×30×3,6 м. Отбирались 20 проб помета (по 5 г одна проба) из одного корпуса (5 проб по длине). Длина корпуса 130 метров. 130 м / 6 проходов = 20 метров: собирали одну субъединицу помета каждые 20 метров длины прохода. В каждую субъединицу помета вошли по 4–5 кишечных и 1–2 цекальных (из слепых отростков) (рис. 3). Эти 5–6 субъединиц со всех проходов составляли одну среднюю пробу помета. Отбирали помет случайным образом и только свежие   (температурой   выше 37 °С) экземпляры. Чем младше птица, тем дольше проходил отбор проб. Старались отбирать в пакет только фекалии, исключив попадание подстилки, пуха, перьев и мусора. Сухой, старый помет не брали. Избегали слишком мокрых и влажных мест, образованных по причине утечки питьевых ниппелей, особенно вдоль стен, у дверей. Тщательно перемешивали пробу прямо в пакете руками до гомогенного состояния, до исчезновения видимых белых кристаллов мочекислых солей, чтобы ооцисты эймерий находились во влажной среде.

Если образец не могли отправить в лабораторию сразу, то хранили пробы с фекалиями и пометом на самой нижней полке холодильника (не ниже +4 °C, не замораживая). На каждом  пакете  указывали дату отбора пробы, номер пробы, название предприятия и площадки, номер корпуса, возраст птицы. Транспортировали в лабораторию, соблюдая терморежим +4 °C в термосумке с хладоэлементами,

не допуская прямого контакта с фекалиями посредством упаковки пакетов с фекалиями в картонную коробочку.

По технологии, принятой на птицефабрике, проводились следующие дезинфицирующие обработки:

1. Влажная  дезинфекция  помета   (по  грязному),  после  вывоза  птицы  на  убойный  завод, дезинфицирующим препаратом в рабочей концентрации 0,5% (17% по действующему веществу — глутаровый альдегид + ЧАС) из расчета 0,25 л/м2 с помощью опрыскивающей установки Empas 220 Вт (Голландия) при давлении 50–60 бар, с экспозицией 3 часа, а также дополнительно в зимнее-весенний период препаратом на основе глутарового альдегида 1%, глиоксаля 7%, смеси ЧАС 25% (четвертично- аммонийные соединения) аэрозольным методом (холодный туман) с концентрацией 0,5%, 5 мл/м3 с экспозицией 12 часов.

2. На следующий день после механической уборки помета проводится дезинфекция дезинфицирующим препаратом в рабочей концентрации 0,5% (17% по действующему веществу — глутаровый альдегид + ЧАС) из расчета 0,5 л/м2.

3. Далее проводили пенную мойку щелочным средством на основе щелочи и комплексных ПАВ и пенных компонентов в 3% рабочей концентрации с экспозицией 15–20 минут, с последующим смыванием водой.

4. Сушка помещения — обязательная процедура.

5.  Первая влажная дезинфекция по чистому дезинфицирующим препаратом в рабочей концентрации 0,5% (17% по действующему веществу — глутаровый альдегид + ЧАС) 0,25 л/м2 с помощью опрыскивающей установки Empas 220 Вт, при давлении 50–60 бар, с экспозицией 3 часа, 1 час проветривание.

6.  Просушка помещения в ночь.

7. Подготовка корпуса, обжиг пола пламенем горелки (пропан-бутан, рис. 6), далее ремонт оборудования, заделка швов пола битумной мастикой (рис. 11).

8. Влажная дезинвазия 5% препаратом на основе глутарового альдегида 1%, глиоксаля 7%, смеси ЧАС 25% (четвертично-аммонийные соединения) проводится   в   зимне-весеннее   и   осенне-зимнее время при норме расхода  0,25  л/м2 с экспозицией 24 часа и дополнительно — в отдельных корпусах по показаниям в течение всего года, при проявлении клинической формы кокцидиозов в предыдущем туре. Следует отметить, что данное средство нами ранее было испытано против ооцист кокцидий Eimeria maxima, Eimeria necatrix, Eimeria tenella и Eimeria acervulina в эксперименте в 2014 г. во Всероссийском научно-исследовательском ветеринарном институте птицеводства,  г.  Ломоносов, который показал высокую эффективность данного препарата в 4–5% рабочей концентрации при экспозиции 24 часа, интенсэффективность при этом составила 87–91%.

9. Вторая влажная дезинфекция по чистому гипо- хлоритом натрия 0,75% (195 литров воды + 7,5 литров концентрата гипохлорита натрия 17%-ного), раствор при этом хорошо и тщательно перемешивался.

10. Побелка бетонных стен и пола гашеной известью.

11. Просушка помещения и оборудования.

12. Дезинсекция помещений спрей-методом.

13. Аэрозольная заключительная дезинфекция формалином 40% с помощью Пульсфог (PulsFOG KA 4, генератор горячего тумана бензиновый), с экспозицией 24 часа.

Общее время подготовки одного корпуса от выселения на убой до заселения новой партии суточных цыплят составляло в среднем 6–7 дней.

По принятой технологии производства в подготовленном птичнике проводили газацию воздуха, соблюдая необходимую выдержку, затем обогрев корпуса и посадку цыплят (рис. 5).

При бесподстилочной технологии в корпуса не завозили и не укладывали подстилку в подготовленный к заселению птичник (рис. 7, 8). Впроцессе выполнения данной работы уточняли и изучали особенности технологии выращивания цыплят-бройлеров без подстилки.

Для контроля фактической зараженности цыплят при разной технологии выращивания проведены копроскопические исследования 10 проб помета (каждая проба по 5 г) из одного птичника в 10; 20 и 35-суточном возрасте цыплят (рис. 12, 13). После завершения технологического цикла производства с целью определения фоновых показателей из каждого птичника было отобрано по 10 проб подстилки и по 10 соскобов из трещин и неровностей пола, которые исследовались по ранее описанному методу (рис. 9, 10).

Результаты исследований  сравнивали  с исходной контаминацией пола птичников и определяли изменения показателей экстенсивности и интенсивности эймериозной инвазии за один технологический цикл при разной технологии производства (бесподстилочной/подстилочной).

Результаты паразитологических исследований 40 проб помета от цыплят-бройлеров 40-суточного возраста при разной технологии их содержания и соскобов из пола птичников:

При исследовании 10 проб помета от  цыплят  при подстилочной технологии содержания ооцисты Emeria spp. выделены в трех пробах (ЭИ 30%).

При исследовании 10 проб помета от цыплят при бесподстилочной технологии содержания ооцисты Emeria spp. обнаружены в двух пробах (ЭИ 20%).

При исследовании 10 соскобов пола птичника, подготовленного к заселению, до проведения дезинвазии  ооцисты  Emeria  spp.  выделены  в  трех пробах (ЭИ  30%),  живые  подстилочные  клещи установлены в четырех пробах (ЭИ 40%). Интенсивность клещевой инвазии — до 10 экз. в одной пробе (рис. 16).

Результаты сравнивали с исходной контаминацией пола птичников и определяли, насколько изменялись показатели экстенсивности и интенсивности эймериозной инвазии за один технологический цикл при разной технологии производства (см. таблицу).

Фоновые результаты паразитологических исследований соскобов пола птичников и 40 проб помета от цыплят-бройлеров 42-суточном возраста при разной технологии их содержания:

При тестировании проб помета от 42-дневных бройлеров (фоновые показатели) при подстилочной технологии содержания ЭИ составила 30% (ооцисты Emeria spp. выделили в трех пробах из 10), при бесподстилочной ЭИ равнялось 20% (см. таблицу).

Анализ соскобов пола (по 10 проб) подготовленных к заселению птичников (до проведения дезинвазии) для выращивания цыплят на подстилке и без нее показал наличие ооцист Emeria spp. соответственно в трех (ЭИ 30%) и двух (ЭИ 20%) пробах.

Кроме этого, выявили живых подстилочных клещей Tyrophagus spp.: в первом случае в четырех образцах (ЭИ 40%), во втором — в двух (ЭИ 20%) Интенсивность клещевой инвазии в обоих случаях была до 10 экз. в одной пробе.

ИИ Emeria spp. в пробах помета 42-дневных цыплят, выращиваемых при разных технологиях, колебалась от 3,3 тыс. до 12,3 тыс. ооцист/г пробы, а в соскобах с пола составила 2,3 тыс. ооцист/г пробы. Паразитологические исследования проб помета бройлеров (см. таблицу) в зимне-весенний период 2024–2025 гг. выявили различия в содержании ооцист Emeria spp. в зависимости от применяемой технологии выращивания.

В 11-дневном возрасте ЭИ у цыплят на подстилке составила 30%, при бесподстилочном содержании — 20%. Интенсивность эймериозной инвазии в первом случае была 2,6–4,5 тыс. ооцист в грамме помета, во втором — 1,8–3,6 тыс. ооцист/г помета.

Интенсивность инвазии в обоих исследуемых корпусах при этом определена по методическим рекомендациям [2] и оценена как низкая и средняя. Также  заслуживает внимания эффективная подготовка помещений — пенная мойка, дезинфекция и дезинвазия, которые позволяют контролировать давление ооцист кокцидий Emeria spp. как при бесподстилочной, так и при подстилочной технологиях содержания цыплят-бройлеров.

С возрастом различия стали более значимыми.   У бройлеров на подстилке в 22-дневном возрасте ооцисты Emeria spp. выделили во всех 10 пробах (ЭИ равно 100%). Интенсивность эймериозной инвазии колебалась от 2,3 тыс. до 32,7 тыс. ооцист  в 1 г помета. Между пробами наблюдали большой разброс в показателях: в четырех пробах количество ооцист в 1 г было 12,3–32,7 тыс., еще в четырех — 3,3–7,8 тыс. и в двух — 2,2,3–3,1 тыс.

При бесподстилочной технологии содержание ооцист Emeria spp. обнаружили в четырех пробах из 20 (ЭИ составила 20%), а ИИ — от 2,2 тыс. до 6,7 тыс. ооцист в 1 г помета.

В семи образцах помета из 10 от 35-дневного молодняка на подстилке выделили ооцисты Emeria spp. (ЭИ равна 70%), интенсивность эймериозной инвазии при этом колебалась от 3,3 тыс. до 7,7 тыс. ооцист/г помета. В случае бесподстилочного выращивания ЭИ составила 100%, а ИИ — от 3,1 тыс. до 12,8 тыс. ооцист в грамме помета. При этом в 12 пробах — 12,8 тыс., в шести — 4,4–11,5 тыс. и в двух пробах — 3,3,1–4,3 тыс. ооцист в грамме.

Из представленных данных видно, что при бесподстилочной технологии выращивания ЭИ кокцидиями  Emeria  spp.  была  значительно  ниже  в первые три недели жизни цыплят-бройлеров и оставалась на уровне 20%. К 35-дневному возрасту ЭИ ооцистами кокцидий в корпусах с подстилочной  и бесподстилочной технологиями выращивания повысилась до 70% и 100% соответственно. Увеличилась и интенсивность инвазии (ИИ) в обеих группах. Вероятно, это связано с набором массы тела цыплятами старше 3–4 недель и выделением большого количества влаги и жидкости организмом.

Паразитологические исследования помета бройлеров по Emeria spp. в зимнее и весеннее время (2024–2025 гг.)

Показатели/технология	Возраст птицы, сут.
	40–42	без птицы, до дезинвазии	10–11	21–22	35
	Ооцисты кокцидий Emeria spp., тыс. в 1 г помета
Подстилочная технология, ЭИ, %	30	30	30	100	70
Подстилочная технология, ИИ, тыс. экз.	3,3–12,3	2,3	2,6–4,5	2,3–32,7	3,3–7,7
Бесподстилочная технология, ЭИ, %	20	20	20	20	100
Бесподстилочная технология, ИИ, тыс. экз.	3,3–12,3	2,3	1,8–3,6	2,2–6,7	3,1–12,8

В период, когда происходит интенсивный рост мышечной ткани и усиленный обмен веществ, действие кокцидиостатиков также снижается по мере увеличения интенсивности кокцидиозной инвазии и ввиду устойчивости эймерий к применяемым кокцидиостатикам салиномицинового ряда. Согласно методическим рекомендациям [2], ИИ в обоих исследуемых корпусах оценена как низкая и средняя. Заслуживает внимания факт, что эффективная подготовка помещений (пенная мойка, дезинфекция, дезинвазия и  др.) позволяет        контролировать давление ооцист кокцидий Emeria spp. как при бесподстилочной, так и при подстилочной технологии выращивания бройлеров.

Данная применяемая программа современной комплексной биозащиты бройлерных предприятий от паразитов (эймерий) обеспечивает высокий уровень санитарии на птицефабрике, однако  пока не позволяет избавиться  от  подстилочных  клещей у цыплят-бройлеров. Вероятно, выработанная у клещей резистентность к действующему веществу цифлутрину 5% при 1% применении не позволила эффективно их контролировать при проведенной дезинсекции. Нами предложено в данном случае применить комплексную инсектоакарицидную программу (КИП), состоящую из адултицидов ФОС, на один тур, а затем выбрать комплексные препараты из  пиретроидов  с  пролонгированным  действием не менее 30 суток, не применявшихся в хозяйстве   1, 2, 3 года до этого, при подготовке помещений «по грязному» и «по чистому». Также в процессе выращивания бройлеров возможно применить безопасные и эффективные препараты ларвицидного действия (циромазин 50%) для прекращения цикла развития от яиц, личинок до имаго клещей.

Заключение

Результаты проведенных исследований позволили оценить уровень санитарии птицеводческого бройлерного предприятия по кокцидиям и клещам. Интенсивность инвазии Eimeria spp. в обоих исследуемых корпусах определена по методическим рекомендациям и оценена как низкая и средняя.

При подстилочной технологии выращивания цыплят-бройлеров в первые три недели жизни экстенсивность кокцидиозной инвазии (ЭИ) Emeria spp. была выше, чем при бесподстилочной технологии (10–11 дней 20–20%), 21–22 дней составила от 30–100% соответственно, т.е. после 3 циклов споруляции ооцист кокцидий она достигала 100%. Интенсивность кокцидиозной инвазии (ИИ) составляла от 2,3 тыс. до 32,7 тыс. ооцист/г помета.

При бесподстилочной технологии ЭИ кокцидиозной инвазии Emeria spp. была значительно ниже до 22-суточного возраста бройлеров, интенсивность кокцидиозной инвазии колебалась от  2,2  тыс.  до 6,7 тыс. ооцист/г помета.

Однако к 35-суточному возрасту ЭИ ооцистами кокцидий Emeria spp.  в  группах  при  подстилочной и бесподстилочной технологиях выращивания бройлеров установилась на уровне 70 и 100% соответственно. При этом интенсивность инвазии в группе при подстилочной технологии выращивания колебалась от 3,3 тыс. до 7,7 тыс. ооцист/г помета,  а в группе при бесподстилочной технологии ИИ составила от 3,1 тыс. до 12,8 тыс. ооцист/г.

Мониторинг давления и контроля кокцидиозов необходимо  продолжать,  а  также  усилить  КИП для предупреждения и профилактики клещей (подстилочных) на исследуемом птицеводческом предприятии.

Перспективы дальнейшей разработки темы и исследований

Необходимо продолжить изучение эпизоотической ситуации по кокцидиозам в процессе технологических циклов выращивания цыплят-бройлеров при бесподстилочной и подстилочной системах по сезонам года в наиболее критические периоды для цыплят-бройлеров по ооцистам эймерий Emeria spp. — поздней осенью и в начале зимы.

Предложено  хозяйству усилить программу КИП препаратами на основе альфациперметрина 10%, тетраметрина 1,5% с ПАВ (адултицид) и при необходимости применять другой препарат на основе циромазина 50% (ларвицид). Через 6 месяцев будет возможность определить эффективность КИП и оценить современную комплексную биозащиту бройлерного предприятия  от  паразитов  (эймерий  и клещей у цыплят-бройлеров) при ветеринарно-санитарных мероприятиях, проводимых на курируемой птицефабрике.

                                                                                                                Литература

1.   Качанова, Е. О. Остаточная обсемененность пола птичников инвазионными элементами в период подготовки к заселению молодняка / Е. О. Качанова, Р. Т. Сафиуллин, П. В. Новиков, А. А. Ташбулатов // Матер. межд. науч. конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». 2017.— № 18. — С. 197–200.

2.   Мурзаков, Р. Р. Методические положения по борьбе с эймериозом цыплят при разной технологии их выращивания в Центральной зоне России / Р. Р. Мурзаков, Р. Т. Сафиуллин, А. А. Ташбулатов. — М., 2012. — 24 с.

3.   Сафиуллин, Р. Т. Кенококс клинер — эффективный препарат против ооцист кокцидий / Р. Т. Сафиуллин, Р. Р. Мурзаков, А. А. Ташбулатов // Ветери- нария. — 2011. — № 9. — С. 36–40.

4.   Сафиуллин, Р. Т. Паразитарные болезни птиц, средства и методы борьбы / Р. Т. Сафиуллин. — М.: ВНИИП – филиал ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, 2019. — С. 5–6.

5.   Сафиуллин, Р. Т. Эффективность кенококса против ооцист кокцидий птиц при напольном содержании ремонтного молодняка кур яичной породы / Р. Т. Сафиуллин, Р. Р. Мурзаков, А. А. Ташбулатов // Материалы докл. научной конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». — М., 2012. — Вып. 13. — С. 362–366.

6.   Заболевания бройлеров / И. Хорват-Папп. — Будапешт, 2013. — С. 395, 413-414.

7.   Snyder R. P. Restoration of anticoccidial sensitivity to a commercial broiler chicken facility in Canada / R. P. Snyder, M. T. Guerin, B. M. Hargis, P. S. Kruth,

G. Page, E. Rejam, J. L. Rotollo, W. Sears, E. G. Zeldenrust, J. Whal, J. R. Barta // Poult. Sci. — 2021. V. 100. № 2. P. 663–674. DOI: 10.1016/j.psj.2020.10.042.

                                                                                                                

* Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и  прикладной паразитологии животных и растений – филиал ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко РАН, лаборатория эпизоотологии и санитарной паразитологии (г. Москва)

Количество показов: 943
Автор:  А. Ташбулатов, канд. вет. наук, ветеринарный врач, старший научный сотрудник*, менеджер по работе с ключевыми клиентами по птицеводству ООО «Сева Санте Анималь»; Р. Сафиуллин, д-р вет. наук, профессор, главный научный сотрудник*; М. Шешенин, ветеринарный врач, Intelclean, научно-технический специалист DOI 10.18720/SPBPU/2/z25-9
Компания:  СEBA Санте Анималь